福林法測定酸性蛋白酶活力
解析蛋白酶活性測定 聚焦蛋白酶研究新進展
1.1原理
福林試劑在堿性條件下可被酚類化合物還原呈藍色反應(yīng)(鉬藍和鎢藍的混合物)。由于蛋白質(zhì)分子 中有含酚基的氨基酸(如酪氨酸、色氨酸和苯丙氨酸等),它使蛋白質(zhì)及其水解產(chǎn)物呈上述反應(yīng),利用這個原理可以測定蛋白酶活力的強弱。
以酪蛋白為作用底物,在一定pH值和溫度下,同酶液反應(yīng),經(jīng)一段時間后加入三氯乙酸,終止酶的反應(yīng),并使殘余的酪蛋白質(zhì)沉淀,同水解產(chǎn)物分開。經(jīng)過濾后取過濾液(含蛋白質(zhì)水解產(chǎn)物的三氯乙酸溶液),用Na2C03堿化,再加入福林試劑使之發(fā)色。
藍色反應(yīng)的強弱與過濾波中蛋白水解產(chǎn)物的量成正比例,而水解產(chǎn)物的量又同酶活力成正比。因此,根據(jù)藍色反應(yīng)的強弱可以計算出蛋白酶的活力。
1.2操作方法
1.2.1 試劑
1.2.1.l福林試劑
于2000ml磨口回流裝置內(nèi)加入鎢酸鈉(Na2WO4·2H2O)100g,鉬酸鈉(NaMoO4·2H2O)25g。水700ml,85%的磷酸50ml,濃鹽酸100ml,文火回流10h,加入硫酸鋰(Li2SO4)150g,蒸餾水50ml,混勻取去冷凝器,加入幾滴液體溴,再蒸沸15min,以驅(qū)逐殘溴及除去顏色,溶液應(yīng)呈黃色。若溶液有綠色,需再加數(shù)滴液溴,再蒸沸除去,冷卻后定容至1000ml,過濾,置于棕色瓶中保存,此溶液使用時加2倍蒸餾水稀釋。
1.2.1.2 0.4mol/l的TCA溶液
稱取三氯乙酸65.4g,加水定容至1000ml。
1.2.1.3 0.8mol/l的碳酸鈉溶液
稱取無水碳酸鈉84.8g,加水溶解,定容至1000ml。
1.2.1.4 pH值為3.6的醋酸緩沖液
稱取NaAc·3H20 16g與268ml濃度為6mol/l的醋酸溶液混合,稀釋定容至1000ml。
1.2.1.5 2%酪蛋白溶液
稱取干酪索20g,加入0.lmol/l的氫氧化鈉20ml,在水浴中加熱溶解,然后用pH值為3.6的醋酸緩沖液定容至1000ml。該試劑配制后應(yīng)及時使用,或放入冰箱內(nèi)保存。
1.2.1.6 100μg/ml酪氨酸溶液
精確稱取在105℃供箱中烘干至值恒重的酪氨酸0.1g,逐步加入0.lmol/l的鹽酸,使之溶解,加蒸餾水定容至1000ml。該試劑配制后也應(yīng)及時使用,或放入冰箱內(nèi)保存。
1.2.2 繪制標準曲線
配制濃度分別為(單位:μg/ml):0、20、40、60、80、100的酪氨酸溶液,各取lml(做4個平行樣),加入不同的試管中,再各加入已稀釋的福林試劑lml和0.4mol/l的碳酸鈉5ml,搖勻,置于水浴鍋中,40℃保溫發(fā)色20min。
然后在721型分光光度計 上進行比色測定(波長660nm,以濃度為0μg/ml的酪氨酸反應(yīng)液做空白對照)。
1.2.3 樣品酶活的測定
稱取酶粉5g,充分碾細,加蒸餾水1000ml,在 4O℃水中攪拌3Omin,充分溶出酶蛋白,然后過濾,濾液用0.1mol/lpH值為3.6的醋酸緩沖液稀釋到一定倍數(shù)。取稀釋液1ml(做平行樣4個),40℃水浴預(yù)熱2min,再各加入經(jīng)同樣預(yù)熱的酪蛋白1ml,精確保溫10min。
然后立即加入 0.4mol/l三氯醋酸2ml,終止反應(yīng)。繼續(xù)置水浴中保溫20min,使殘余蛋白質(zhì)沉淀,然后離心分離或過濾。取濾液lml,再加入0.8mol/l碳酸鈉溶液5ml和已稀釋的福林試劑1ml,搖勻保溫發(fā)色20min后,進行比色測定。對照標準曲線,計算酪氨酸的釋放量。
l.2.4 酶活計算
蛋白酶活力=A×4×N/10
式中:A——對照標準曲線得出的酪氨酸釋放量;
4--4ml反應(yīng)液取出1ml;
N--酶粉的稀釋倍數(shù);
10——反應(yīng)時間10min。
酸性蛋白酶酶活定義:在40℃,每分鐘水解干酪素產(chǎn)生1μg酪氨酸定義為一個蛋白酶活力單位.
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