細胞培養重難點
一.細胞復蘇
1、提前準備完全培養基并預熱至37℃（可以放至在水浴或培養箱中進行預熱，需要多少預熱多少，反復預熱會導致培養基失活）；用清洗潔凈的燒杯或其他合適容器裝有適量超純水，然后放入37-38℃水浴鍋中預熱至37℃（至少需30min）；把所需耗材和其他物品放置于超凈工作臺中紫外照射滅菌；
2、提前查詢所取凍存管的存放位置，把整個存儲架子提起，為了降低復溫對其它細胞的影響，可把該存儲架子放置于裝有液氮的泡沫盒中，快速（存儲架離開液氮罐的時間不要超過1分鐘，否則其余細胞容易復溫死亡，凍存管子的液氮會氣化爆炸）從液氮罐中取出凍存管并放置于裝有液氮的保溫杯中(必須用用潔凈鑷子取出凍存管，以免凍傷手)，立即把存儲架回液氮罐；用鑷子把剛才置于保溫杯的凍存管取出，并立即（不要耽擱）放入上述準備好的水浴中（放入之前快速檢查蓋子是否擰緊，蓋子切勿沒入水中，以免進水污染），用鑷子鑷好凍存管，快速沿著容器內壁轉圈，細胞未凍融時（1min內）切勿取出觀察，細胞凍融時間一般為1-2 min，如果超過2min仍未凍融，應棄用該管細胞，凍融后立即用70%酒精消毒該凍存管，然后立即放入超凈工作臺中；
3、打開凍存管蓋，用移液管吹打細胞3次，然后立即把細胞轉移至提前準備的裝有5-10ml預熱的完全培養基的15ml離心管中；
4、離心，小心移除上清；
5、加入5ml預熱完全培養基，吹打重懸細胞，然后把細胞懸液轉移至T25培養瓶中，并放入二氧化碳培養箱（5% CO2, 37℃）中培養；
6、第二天觀察細胞的貼壁情況，并進行換液。
注意事項
1.細胞復蘇操作要求快速，否則細胞容易在凍融過程中產生冰晶，從而導致細胞死亡，所以必須提前準備好所需的培養基、培養耗材和其他所需物品，絕對不允許臨時準備；
2.在解凍細胞前，必須把超凈工作臺準備至工作狀態，提前準備裝有5-10ml預熱的完全培養基的15ml離心管；
3.為了降低復溫對其它細胞的影響，可把該存儲架子放置于裝有液氮的泡沫盒中；
4.存儲架離開液氮罐的時間一般不要超過1分鐘，否則其余細胞容易復溫死亡，凍存管子的液氮氣化爆炸；
5.放入之前快速檢查蓋子是否擰緊，蓋子切勿沒入水中，以免進水污染；
6.細胞未凍融時（1min內）切勿取出觀察；
7.根據復蘇細胞的大小選擇合適的離心速度和時間，一般不超過1000RPM,10min；
8.復蘇后的第二天必須要進行換液（加入培養基的量根據細胞的密度和生長速度），以降低凍存保護劑DMSO的影響；
9.離心速度和時間依據具體細胞決定；
10.上述是以T25培養瓶為例，具體選用何種培養器皿取決于細胞生長密度需求（啟動正常生長所需的密度）。
二.細胞換液培養
1、全量換液：把所有的舊培養液移除，加入新的培養液（加入培養基的量根據細胞的密度和生長速度）；
2、半量換液：把舊培養液移至15ml離心管中，然后在培養器皿中加入適量新培養基（避免細胞離開培養液太久），把裝有舊培養液的離心管進行離心（1000RPM, 10min），離心后取適量舊培養上清至培養器皿中。
注意事項
1.全量換液適合于生長較快的腫瘤細胞，因為這些細胞可在短期內分泌足夠的因子來支撐其生長；
2.半量換液主要適合于生長較慢的原代細胞和干細胞，這些細胞很難在短期內分泌足夠的因子來支撐其生長，舊培養液中恰好含有這些因子；
3.新舊培養液的配比取決于細胞的密度和生長速度及其自身的特性，請參照具體細胞的培養建議，一般為3:1（新：舊）；
4.如果細胞發生發生污染，切勿進行半量換液。
三.細胞傳代培養
1、當細胞密度達到其生長密度極限時（一般腫瘤細胞為80-100%，原代細胞和干細胞為80-90%，有些細胞為40-50%，熟知所養細胞的生長密度極限），移除舊培養液；
2、用PBS洗滌兩次（舊培養中的鈣離子會抑制胰酶的活性），加入1ml胰酶消化液（以T25培養瓶為例），立即蓋好蓋子，把培養瓶置于倒置顯微鏡下觀察，如大部分細胞變圓，立即移除胰酶消化液（如大部分細胞漂起，可不移除胰酶消化液），加入5ml預熱完全培養基，用吸管取培養液吹打瓶壁細胞，使其脫離瓶壁形成單細胞懸液，離心，小心移除上清；
3、加入5ml預熱完全培養基，吹打重懸細胞用細胞計數板在顯微鏡下計算細胞數，分裝入T25培養瓶中，添加基至總體積為5ml，置于37℃、5%CO2培養箱中培養；傳代1次。
注意事項
1.熟知所養細胞的生長密度極限；
2.第一次進行所養細胞傳代時，消化時必須把培養瓶置于倒置顯微鏡下觀察，并記錄所需時間，下次按照該時間執行即可；
3.進行細胞傳代時必須結合考慮細胞生長密度需求（啟動正常生長所需的密度）和實際的工作需求，在滿足細胞生長密度需求的前提下，需要多少瓶就傳多少瓶，降低工作強度和試劑耗材消耗；
4.離心速度和時間依據具體細胞決定。
四.細胞凍存保種
1、提前配制凍存液：用血清或完全培養基配制5-10%DMSO（根據具體細胞決定）凍存液；
2、消化收取細胞：當細胞密度即將達到其生長密度極限時進行換液，第二天，移除舊培養液，用PBS洗滌兩次（舊培養中的鈣離子會抑制胰酶的活性），加入1ml胰酶消化液（以T25培養瓶為例），立即蓋好蓋子，把培養瓶置于倒置顯微鏡下觀察，如大部分細胞變圓，立即移除胰酶消化液（如大部分細胞飄起，可不移除胰酶消化液），加入5ml預熱完全培養基，用吸管取培養液吹打瓶壁細胞，使其脫離瓶壁形成單細胞懸液，離心，小心移除上清；
3、加入適量（消化前預估細胞的數量，1-2*10E6/ml凍存液）凍存液并吹打混勻，分裝至凍存管中，標記凍存細胞的名稱、冷凍日期、操作者姓名拼音簡寫，然后放入梯度降溫盒（提前復溫至室溫），置于-80℃過夜，次晨置于液氮罐中保存。
注意事項
1.密切觀察細胞的生長密度，當細胞密度即將達到其生長密度極限時進行換液，以便第二天進行保種；
2.消化前進行凍存液配制，切勿用培養基和血清重懸細胞后再加入DMSO，這樣會導致局部高濃度的DMSO對細胞產生損傷；
3.消化前預估細胞的數量，加入適量凍存液，以使細胞密度為1-2*10E6/ml，密度過高會導致凍存保護液不足，密度過低會導致凍存液對細胞有毒性；
4.梯度降溫盒必須提前復溫至室溫，切勿從-80℃取出即可使用，這樣會導致細胞全部死亡；
5.離心速度和時間依據具體細胞決定。
