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同源重組法構(gòu)建質(zhì)粒
發(fā)布日期:2025-03-07 10:02:30


同源重組法構(gòu)建質(zhì)粒


什么是質(zhì)粒構(gòu)建?

       質(zhì)粒構(gòu)建是分子生物學研究中常用的實驗技術,質(zhì)粒是能夠?qū)崿F(xiàn)自主復制的環(huán)狀DNA分子,質(zhì)粒構(gòu)建即是將特定的基因序列插入到工程質(zhì)粒中,再把質(zhì)粒轉(zhuǎn)化到細菌、細胞或者酵母中,使得質(zhì)粒能夠在其中表達的過程。

 

同源重組法構(gòu)建質(zhì)粒的原理是?

       將選定的目的外源基因(DNA)進行PCR擴增后,用限制性內(nèi)切酶切割載體,再使用同源重組酶將切割后的載體與DNA片段連接后轉(zhuǎn)入宿主細胞,最后經(jīng)過篩選和測序鑒定出正確的重組克隆質(zhì)粒,實現(xiàn)目的基因再宿主細胞內(nèi)的表達。

 

用途是什么?

       用于外源蛋白的過表達。

 

需要哪些材料和儀器?

       目的片段的cDNA、引物、載體、限制性內(nèi)切酶、酶切buffer、LB培養(yǎng)基、含LB培養(yǎng)基的細菌培養(yǎng)皿、同源重組酶、高保真酶、感受態(tài)細胞DH5α、膠回收試劑盒、質(zhì)粒小提試劑盒、EP管、離心管、移液槍及槍頭等等。

 

有哪些步驟?

       同源重組法構(gòu)建質(zhì)粒的步驟如下:

①根據(jù)目的片段的酶切位點,選擇相應的內(nèi)切酶,通過雙酶切法將環(huán)狀載體質(zhì)粒切割成線性化載體,用瓊脂凝膠法回收酶切產(chǎn)物,回收具體方法按照試劑盒來操作;

②用PCR法擴增目的片段的序列,用瓊脂糖凝膠法回收擴增產(chǎn)物;

③將線性化的載體與擴增的片段按比例進行連接,50℃條件下,30min或更長時間(1~2h)。將連接好的重組質(zhì)粒(10μl)轉(zhuǎn)入克隆感受態(tài)細胞DH5α,輕輕吹打均勻(注意一定不要通過振蕩來混勻),冰上靜置30min,然后42℃水浴熱激90s后立即置于冰上靜置冷卻2~3min;

④加入500μl不添加抗生素的LB液體培養(yǎng)基,37℃搖菌1h,轉(zhuǎn)速250rpm;

⑤將上一步的菌液在5000rpm條件下離心5min,棄去上清300μl。再用剩余培養(yǎng)基將菌體重懸,最好是能夠按照不同的梯度來進行涂板操作,防止單克隆菌過密或者過疏,用無菌涂布棒在含有質(zhì)粒抗性的平板上涂勻后,放置于37℃的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)10~12h;

⑥過夜后,用1μl槍頭挑單克隆菌,放置于5ml的含抗生素的LB液體培養(yǎng)基中繼續(xù)培養(yǎng)10~12h;

⑦質(zhì)粒小提試劑盒提取菌液中的重組質(zhì)粒后,用限制性內(nèi)切酶消化后,進行瓊脂糖電泳做酶切鑒定;

⑧在進行第七步的同時,可以吸取部分菌液做菌液PCR,PCR產(chǎn)物瓊脂糖凝膠電泳通過觀察條帶大小來進一步鑒定重組質(zhì)粒是否正確;

⑨將鑒定成功的菌液送到測序公司進行雙向測序,待測序結(jié)果比對正確后,表示重組質(zhì)粒構(gòu)建成功,可以進行下游實驗。

 

注意!!!

1.構(gòu)建質(zhì)粒的時候,目的基因片段不要大于載體的長度,如果基因片段為載體長度的1/2以上,會加大連接的難度;

2.如果后續(xù)的質(zhì)粒需要做蛋白表達,那么在最開始選擇載體的酶切位點時就要注意是否會發(fā)生移碼突變,否則后續(xù)蛋白表達會出錯;

3.同源重組法的引物設計需要在插入片段正/反向PCR引物5‘端引入線性化載體的末端序列,使得PCR產(chǎn)物5’和3‘最末端分別帶有和線性化載體兩末端一致的序列(15~20bp),同源臂的GC含量盡可能低于60%,酶切序列可以選擇性去增加,如果增加的話能夠便于后續(xù)的酶切鑒定;

4.做感受態(tài)轉(zhuǎn)化實驗時,注意重組質(zhì)粒的體積不超過感受態(tài)的1/10,否則可能導致實驗失敗。

 

常見問題

1.膠回收的產(chǎn)物低、濃度不足以做連接時,可以增加實驗的起始量,因為大部分膠回收試劑盒的回收率僅為30%~60%,所以載體酶切和擴增片段時可以用100μl的跑膠體積;

2.擴增的PCR產(chǎn)物無條帶或者條帶弱時,需要檢查引物的Tm值以及GC比,可以更換引物或者改變PCR的條件,使其達到最優(yōu);

3.涂板后沒有菌落或很少菌落時,可能是線性化克隆載體和插入片段擴增產(chǎn)物的使用量不足或者過量,或者比例不佳,也可能是使用單酶切載體后載體自連所導致,建議使用雙酶切法切割載體,防止自連;

4.菌液PCR無條帶,可能是載體連接不成功,引物設計問題所導致的。