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生物大分子的離心分離實(shí)例
發(fā)布日期:2022-11-07 09:41:42


生物大分子的離心分離實(shí)例


例( 1 )去蛋白的 RNA 分離:

( i ) 樣品勻漿加入 9 倍容積的冰冷 20mM Tris-HCl ( PH8.0 ) 1mMEDTA 。

( ii ) 加入 1/10 容積的 10% SDS ,再加入等容積的(苯酚:氯仿:異丙醇)(容積比 50 : 50 : 2 )溶液并含有 0.1% 的 8- 羥基喹啉溶液充分混合使其乳化。

( iii ) 以上溶液在 10,000xg 離心 10 分鐘。

( iv ) 移出上清液,重復(fù)( ii )( iii )過程一次。

( v ) 第二次離心后上清液中加入 1/10 容積的 3M 醋酸銨,充分混合后再加入二倍容積的乙醇,并在 -20 ℃ 靜置二小時(shí)以上。

( vi ) 10,000xg 5 ℃ 離心10 分鐘得到 RNA 沉淀。

( vii ) 用干燥的 N2 氣體蒸發(fā)掉沉淀中殘留的乙醇。

( viii ) 將 RNA 溶于 20mMTris-HCl ( PH8.0 ), 1mMEDTA 中, -20 ℃ 低溫保存待用。


例( 2 )從大腸桿菌中分離質(zhì)粒 DNA :

( i ) 溶液制備:

溶液 I : 50mM 葡萄糖, 10mM ( EDTA ), 25mM Tris-HCl ( PH8.0 )

溶液 II : 0.2M NaOH , 1% SDS

溶液 III : 3M 醋酸納( PH4.8 )

TE 緩沖液: 10mMTris-HCl ( PH7.4 ), 2mM EDTA

( ii ) E. Coli 培養(yǎng)液 1 升 (量大按比例配置)

( iii )將 1 升 培養(yǎng)液在 4,000rpm (約 2,000xg ), 5 ℃ 離心 20 分鐘,得到細(xì)菌沉淀。

( iv )用 100ml 冰冷的溶液 I “洗”沉淀,再次離心, 4,000rpm , 5 ℃ , 20 分。

( v )用 20ml 冰冷溶液 I 將第二次離心沉淀調(diào)成均勻懸浮液。

( vi )每 ml 懸浮液加入 2mg 溶菌酶,并在 0 ℃ 冰浴中放置 10 分鐘。

( vii )加入 40ml 溶液 II ,輕輕攪拌后,在冰浴中放置 5 分鐘。

( viii )加入 30ml 溶液 III ,在冰浴中放置 20 分鐘,使蛋白質(zhì)大部分沉降。

( ix )在高速冷凍離心機(jī)上用角式轉(zhuǎn)頭, 10,000rpm (約 10,000xg )離心 15 分鐘, 5 ℃ 。

( x )小心地倒去上清(不擾動(dòng)沉淀),在沉淀中加入 55ml 異丙醇,即得到粗制的質(zhì)粒 DNA 溶液。

( xi )粗制 DNA 液在 -20 ℃ 靜置 15 分鐘以上,再在 12,000rpm (約 15,000xg ) 4 ℃ 離心 5 分鐘,倒去上清液。

( xii )真空中抽去異丙醇,沉淀中加入 18ml 經(jīng)過消毒的 TE 緩沖液,在沉淀溶解后再加入 0.65ml , 1% E.B.

( xiii )以上溶液每 ml 加入分析純 CsCl 1 克 ,使其完全溶解,檢測(cè)溶液折射率應(yīng)為1.3890 (密度≈ 1.587 )

( xiv )用以上溶液按照參考文獻(xiàn)( 6 )所介紹的方法作質(zhì)粒 DNA 分離。

( xv )離心后在 300nm 紫外光下可顯示 DNA 帶(線性 DNA 帶和質(zhì)粒 DNA 帶, RNA 沉淀在底部,蛋白質(zhì)浮在液面)。

( xvi )用文獻(xiàn)( 1 )介紹的方法取出質(zhì)粒 DNA ,抽提去掉 E.B. 透析法或脫鹽柱去除 CsCl 。


例( 3 )用 CsCl 梯度分離 DNA 并測(cè)定其組成( % G+C )

( i ) CsCl 溶液密度 D 與溶液中 CsCl 的重量百分比濃度 P 之間的關(guān)系: D=138.11/ ( 137.48-P )

( ii ) 制備初密度為 1.706 克 / 毫升的梯度液,應(yīng)按以下要求配置

4.85 克 CsCl (分析純)

50 μ l , 1.0M Tris-HCl ( PH7.4 )

20 μ l , 0.2M EDTA ( PH7.4 )

0.5ml DNA 樣品

3.3ml 重蒸水

( iii ) 用光折射儀檢測(cè) CsCl 的初始密度 D ,設(shè)測(cè)得的光折射率為 RI ,則有 D=10.8601 × RI-13.4974

( iv ) 測(cè)得的 RI 應(yīng)為 1.4000 ,如果檢測(cè)值大于此值,再加重蒸水容量為 V (毫升),梯度液的總?cè)萘繛?G (毫升), V=1.52 × G ×( D 測(cè)定 -D 需要),如果檢測(cè)值小于 1.4000 ,那么再加固態(tài) CsCl ( W )克

W=1.32 × G ×( D 需要 -D 測(cè)定)

( v ) 再測(cè)溶液折射率直至調(diào)整 RI=1.4000

( vi ) 將配置好的液體充滿于 5ml 的一次性快速密封離心管,并利用封口機(jī)密封。

( vii ) 固定角式轉(zhuǎn)頭 150,000xg , 20 ℃ 離心 50~55 小時(shí)(約 35,000rpm )或垂直管轉(zhuǎn)頭 300,000xg , 20 ℃ 離心 12 小時(shí)(約 55,000rpm )

( viii ) 離心后利用梯度儀或手工收集成 50 管(每管 100 μ l )。

( ix ) 對(duì)每管樣品測(cè)定折射率至小數(shù) 4 位,測(cè)試過程中應(yīng)保持樣品溫度為 20 ℃ ,根據(jù)折射率 RI 計(jì)算各管樣品的密度 D 。

( x ) 每管中加 1 毫升重蒸水,在 260nm 波長(zhǎng)時(shí)分別測(cè)各管光密度( OD ),如果 DNA 已做了同位素標(biāo)記,那么還要對(duì)收集的樣品分別做液體閃爍計(jì)數(shù)儀測(cè)定輻射值。

( xi ) 以離心管容量為橫坐標(biāo)(從管底至管面),分別以各管測(cè)得的 OD 值或同位素放射計(jì)數(shù)值為縱坐標(biāo)作曲線。找到曲線的峰值位置即可做 DNA 定位。

( xii ) 用下式計(jì)算 DNA 組成:

  % ( G+C ) = ( D-1.66 ) /0.098 × 100
如果能在離心樣品中加入標(biāo)準(zhǔn) DNA ,計(jì)算就更加準(zhǔn)確。



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